Correlations of serum eukaryotic translation promoter 2α and activated transcription factor 4 levels with renal tissue injury and renal function in diabetic nephropathy patients
-
摘要:目的
探讨糖尿病肾病(DN)患者血清真核细胞翻译启始子2α(eIF2α)、活化转录因子4(ATF4)水平与肾组织损伤程度和肾功能的相关性。
方法选择102例DN患者(DN组)和102例单纯糖尿病患者(对照组)为研究对象, 根据肾组织损伤严重程度将DN患者分为微量白蛋白尿期组(MG组, 35例)、显性蛋白尿期组(PG组, 41例)和肾功能不全期组(RIG组, 26例)。检测血清eIF2α、ATF4、尿素氮(BUN)、血肌酐(Scr)、胱抑素C(CysC)、估算的肾小球滤过率(eGFR)水平。采用Pearson相关性分析探讨eIF2α、ATF4与BUN、Scr、CysC、eGFR的相关性,采用多因素Logistic回归分析探讨DN发病的危险因素,采用受试者工作特征(ROC)曲线分析eIF2α和ATF4诊断DN的价值。
结果DN组血清eIF2α、ATF4、BUN、Scr、CysC水平高于对照组, eGFR低于对照组,差异有统计学意义(P<0.05)。RIG组血清eIF2α和ATF4水平高于PG组和MG组,差异有统计学意义(P<0.05)。DN患者血清eIF2α、ATF4水平与BUN、Scr、CysC呈正相关,与eGFR呈负相关(P<0.05)。较长糖尿病病程、较高体质量指数、高水平eIF2α、高水平ATF4是DN的危险因素(P<0.05)。eIF2α、ATF4诊断DN的曲线下面积分别为0.770、0.799, 联合诊断曲线下面积为0.879, 大于单独诊断(P<0.05)。
结论DN患者血清eIF2α、ATF4水平增高,且与DN肾损伤程度加重以及肾功能减退有关, eIF2α联合ATF4在DN诊断中有较高价值。
-
关键词:
- 糖尿病肾病 /
- 肾功能 /
- 内质网应激 /
- 真核细胞翻译启始子2α /
- 活化转录因子4
Abstract:ObjectiveTo investigate the correlations of serum eukaryotic translation promoter 2α (eIF2α) and activated transcription factor 4 (ATF4) levels with the degree of renal tissue injury and renal function in patients with diabetic nephropathy (DN).
MethodsA total of 102 patients with DN (DN group) and 102 patients with simple diabetes (control group) were selected. According to the severe degree of renal tissue damage, the patients with DN were divided into microalbuminuria group (MG group, 35 cases) and dominant albuminuria group (PG group, 41 cases) and renal dysfunction group (RIG group, 26 cases). Serum levels of eIF2α, ATF4, urea nitrogen (BUN), creatinine (Scr), cystatin C (CysC) and estimated glomerular filtration rate (eGFR) were measured. Pearson correlation analysis was used to explore the correlations of eIF2α and ATF4 with BUN, Scr, CysC and eGFR; multivariate Logistic regression analysis was used to explore the risk factors of DN; receiver operating characteristic (ROC) curve was used to analyze the value of eIF2α and ATF4 in diagnostic of DN.
ResultsSerum levels of eIF2α, ATF4, BUN, Scr and CysC in the DN group were higher than those in control group, eGFR was lower than that in control group (P < 0.05). Serum eIF2α and ATF4levels in the RIG group were higher than those in PG and MG groups (P < 0.05). Serum eIF2α and ATF4 levels in DN patients were positively correlated with BUN, Scr and CysC, and negatively correlated with eGFR (P < 0.05). Long duration of diabetes, higher body mass index, high level of eIF2α and high level of ATF4 were risk factors for DN (P < 0.05). The area under the curve of eIF2α and ATF4 in diagnosis DN was 0.770 and 0.799, respectively, and the area under the curve of their combined diagnosis was 0.879, which was higher than that of single diagnosis (P < 0.05).
ConclusionSerum levels of eIF2α and ATF4 are increased in patients with DN, which is related to the severity of renal injury and renal dysfunction in DN. The combination of eIF2α and ATF4 is of high value in the diagnosis of DN.
-
骨质疏松是一种以骨组织微结构退化和骨量降低为特点的代谢性骨病,此类患者骨密度降低、骨脆性增加,骨折风险明显升高[1-2]。2型糖尿病患者处于高血糖状态且病程较长,是骨质疏松高发人群[3]。骨质疏松及其引起的骨折导致2型糖尿病患者致残率及全因死亡率明显升高,已成为危害人类健康的重大公共卫生问题[4]。骨质疏松发病隐匿,早期无特异性症状,很多患者出现脆性骨折等严重后果时才就诊,延误了治疗的最佳时机,而早期诊断骨质疏松并及早干预,可以改善患者预后。糖尿病代谢功能紊乱可破坏成骨细胞与破骨细胞动态平衡,造成成骨细胞减少及破骨细胞过度活化,最终导致骨质疏松[5]。C1q/肿瘤坏死因子相关蛋白3(CTRP3)与脂联素高度同源,参与调节糖脂代谢、免疫功能等生理过程,以及炎症等病理过程[6]。CTRP3通过介导ERK1/2以及PI3K信号通路来刺激软骨细胞以及骨细胞增殖[7]。研究[8-9]表明, CTRP3与绝经后女性骨密度降低有关,推测CTRP3可能参与了骨质疏松的发生过程,但目前仍缺乏有力证据支持。本研究分析CTRP3在2型糖尿病骨质疏松发生过程中的作用,现将结果报告如下。
1. 资料与方法
1.1 一般资料
选取2020年1月—2021年12月在本院内分泌科接受住院治疗的93例2型糖尿病合并骨质疏松患者为观察组,所有患者均符合《中国2型糖尿病防治指南》[10]诊断标准,并符合《原发性骨质疏松症诊疗指南(2017)》[11]诊断标准。排除标准: ①孕产妇及哺乳期患者; ②心功能不全及肝肾功能障碍者; ③ 1型糖尿病患者; ④单纯骨质疏松症患者; ⑤ 2型糖尿病伴有其他并发症的患者; ⑥甲状旁腺功能亢进、甲状腺炎、甲状腺功能减退/亢进等代谢性疾病患者; ⑦急性或慢性炎症性疾病及自身免疫性疾病患者; ⑧纳入研究前3个月内使用过糖皮质激素、双膦酸盐、激素替代疗法等患者; ⑨精神障碍及恶性肿瘤患者。同期选取80例单纯2型糖尿病患者为对照组,均符合糖尿病诊断标准[10]。研究对象均签署知情同意书,本研究符合《世界医学协会赫尔辛基宣言》且获得本院伦理委员会的批准(批件号: 20191127001)。
1.2 方法
1.2.1 一般资料
收集研究对象性别、年龄、糖尿病病程、饮酒史、吸烟史、血压(收缩压和舒张压)等人口学资料,并计算体质量指数(BMI)。检测入院次日清晨空腹血糖(FBG),检测方法为氧化酶法,同时采用稳态模型计算胰岛素抵抗指数(HOMA-IR)。采用电化学发光分析仪检测入院时空腹胰岛素(FINS)。采用全自动生化分析仪(贝克曼库尔特AU5800)检测入院时糖化血红蛋白(HbA1c)、甘油三酯(TG)、总胆固醇(TC)、高密度脂蛋白胆固醇(HDL-C)和低密度脂蛋白胆固醇(LDL-C)。
1.2.2 血清CTRP3水平
采集入院时肘静脉血5 mL, 以3 000转/min离心10 min, 离心半径15 cm, 留取血清保存在-70 ℃冰箱中。采用酶联免疫吸附法检测CTRP3水平,试剂盒购自上海酶联生物科技有限公司,酶标仪为美国Thermo公司的Multiskan FC型。
1.2.3 骨密度测量
采用GE Lunar Prodigy Advance骨密度检测仪测量全髋、股骨颈以及L1~L4脊柱的骨密度,取所有部位的骨密度并计算平均值。
1.2.4 骨代谢指标
采用酶联免疫吸附法检测骨代谢指标,包括骨钙素N-端中分子片段(N-MID)、Ⅰ型胶原羧基端肽β-胶原特殊序列(β-CTX)、Ⅰ型前胶原氨基端前肽(PINP)、Ⅰ型前胶原羧基端前肽(PICP)、骨碱性磷酸酶(B-ALP)以及抗酒石酸盐酸性磷酸酶异构体5b(TRACP-5b), 试剂盒由上海酶联生物科技有限公司提供,酶标仪为美国Thermo公司的Multiskan FC型。
1.3 统计学分析
采用SAS 9.4软件对数据进行统计分析,定量资料符合正态分布的以均数±标准差描述,成组比较行t检验,计数资料以[n(%)]描述,比较采用χ2检验; 采用多重线性回归分析血清CTRP3与糖脂代谢指标、骨代谢指标以及骨密度的关系,采用Logistic回归模型分析骨质疏松的影响因素,绘制受试者工作特征(ROC)曲线以评估血清CTRP3对骨质疏松的诊断价值。P < 0.05为差异有统计学意义。
2. 结果
2.1 2组临床资料比较
观察组女性及吸烟史比率高于对照组,年龄大于对照组,糖尿病病程长于对照组, FBG、HOMA-IR、FINS、HbA1c、N-MID、β-CTX、TRACP-5b水平高于对照组,血清CTRP3水平、BMI、骨密度、PINP、PICP、B-ALP低于对照组,差异均有统计学意义(P < 0.05)。2组饮酒史、收缩压、舒张压、TG、TC、HDL-C、LDL-C比较,差异无统计学意义(P>0.05)。见表 1。
表 1 2组临床资料比较(x±s)[n(%)]临床资料 观察组(n=93) 对照组(n=80) t/χ2 P 性别 男 41(44.09) 50(62.50) 5.849 0.016 女 52(55.91) 30(37.50) 年龄/岁 68.75±8.22 63.19±9.45 4.146 <0.001 体质量指数/(kg/m2) 21.06±3.89 23.05±3.07 3.692 <0.001 糖尿病病程/年 13.75±2.67 11.29±2.34 6.391 <0.001 饮酒史 是 49(52.69) 38(47.50) 0.463 0.496 否 44(47.31) 42(52.50) 吸烟史 是 34(36.56) 17(21.25) 4.848 0.028 否 59(63.44) 63(78.75) 收缩压/mmHg 135.29±10.86 132.57±11.34 1.619 0.109 舒张压/mmHg 86.31±7.29 87.60±8.01 1.116 0.269 空腹血糖/(mmol/L) 8.72±1.50 8.21±1.46 2.267 0.025 胰岛素抵抗指数 7.01±1.87 6.38±1.95 2.178 0.032 空腹胰岛素/(mmol/L) 18.35±4.92 16.82±5.13 2.009 0.047 糖化血红蛋白/% 8.59±1.23 7.50±1.02 6.281 < 0.001 甘油三酯/(mmol/L) 1.80±0.37 1.77±0.32 0.579 0.572 总胆固醇/(mmol/L) 5.11±0.89 4.86±0.77 1.963 0.052 高密度脂蛋白胆固醇/(mmol/L) 1.27±0.23 1.34±0.26 1.882 0.062 低密度脂蛋白胆固醇/(mmol/L) 2.86±0.50 2.73±0.45 1.795 0.076 CTRP3/(ng/mL) 73.29±18.85 89.21±20.03 5.381 < 0.001 骨密度/(g/cm2) 0.73±0.19 1.08±0.22 11.239 < 0.001 N-MID/(μg/L) 27.26±7.12 18.64±6.58 8.226 < 0.001 β-CTX/(μg/L) 0.70±0.19 0.43±0.16 10.027 < 0.001 PINP/(μg/L) 46.90±7.33 78.17±8.59 25.846 < 0.001 PICP/(μg/L) 175.86±31.08 233.51±28.60 12.625 < 0.001 骨碱性磷酸酶/(ng/L) 53.19±8.87 75.46±9.93 15.581 < 0.001 TRACP-5b/(U/L) 8.27±2.11 4.98±1.75 11.058 < 0.001 CTRP3: C1q/肿瘤坏死因子相关蛋白3; N-MID: 骨钙素N-端中分子片段; β-CTX: Ⅰ型胶原羧基端肽β-胶原特殊序列;
PINP: Ⅰ型前胶原氨基端前肽; PICP: Ⅰ型前胶原羧基端前肽; TRACP-5b: 抗酒石酸盐酸性磷酸酶异构体5b。2.2 2型糖尿病合并骨质疏松患者血清CTRP3影响因素的多重线性回归分析
以血清CTRP3为因变量,以糖脂代谢指标、骨密度、骨代谢指标为自变量,构建多重线性回归模型,校正性别、年龄、BMI、糖尿病病程以及吸烟史后, FBG、HOMA-IR、FINS、HbA1c、N-MID、β-CTX、TRACP-5b与CTRP3水平呈负相关(P < 0.05), PINP、PICP、B-ALP与CTRP3水平呈正相关(P < 0.05)。见表 2。
表 2 2型糖尿病合并骨质疏松患者血清CTRP3影响因素的多重线性回归分析检测指标 非标准化 标准化偏回归系数 t P 偏回归系数 标准误 空腹血糖 -0.335 0.018 -0.318 3.382 0.011 胰岛素抵抗指数 -0.319 0.015 -0.304 3.209 0.013 空腹胰岛素 -0.397 0.019 -0.339 3.561 0.005 糖化血红蛋白 -0.286 0.011 -0.251 2.985 0.026 甘油三酯 -0.079 0.003 -0.072 1.803 0.098 总胆固醇 -0.051 0.002 -0.046 0.957 0.516 高密度脂蛋白胆固醇 0.037 0.001 0.035 0.822 0.672 低密度脂蛋白胆固醇 -0.022 0.001 -0.018 0.513 0.725 骨钙素N-端中分子片段 -0.519 0.023 -0.516 3.956 0.001 β-CTX -0.723 0.034 -0.682 5.862 <0.001 Ⅰ型前胶原氨基端前肽 0.638 0.029 0.611 4.031 0.001 Ⅰ型前胶原羧基端前肽 0.517 0.026 0.495 3.865 0.004 骨碱性磷酸酶 0.583 0.031 0.570 3.927 0.004 TRACP-5b -0.624 0.026 -0.614 4.861 0.001 β-CTX: Ⅰ型胶原羧基端肽β-胶原特殊序列; TRACP-5b: 抗酒石酸盐酸性磷酸酶异构体5b。 2.3 2型糖尿病患者骨质疏松影响因素的多因素Logistic回归分析
以2型糖尿病是否合并骨质疏松为因变量(0=无骨质疏松, 1=骨质疏松),以单因素分析中有统计学意义的变量为自变量,构建Logistic回归分析模型,结果显示, FBG、HOMA-IR、FINS、HbA1c、CTRP3以及骨密度、骨代谢指标等均是2型糖尿病患者并发骨质疏松的独立影响因素(P < 0.05), 其中FBG、HOMA-IR、FINS、HbA1c、N-MID、β-CTX、TRACP-5b是危险因素(OR>1, P < 0.05), CTRP3、骨密度、PINP、PICP、B-ALP是保护因素(OR < 1, P < 0.05)。见表 3。
表 3 2型糖尿病患者骨质疏松影响因素的多因素Logistic回归分析变量 β SE(β) Waldχ2 P OR 95%CI 下限 上限 空腹血糖 0.095 0.001 4.529 0.043 1.100 1.037 1.183 胰岛素抵抗指数 0.109 0.001 5.024 0.041 1.115 1.086 1.190 空腹胰岛素 0.162 0.003 5.852 0.026 1.176 0.075 1.217 糖化血红蛋白 0.276 0.011 6.971 0.003 1.318 1.125 1.516 CTRP3 -0.349 0.025 8.293 0.001 0.705 0.586 0.925 骨密度 -0.238 0.009 5.916 0.023 0.788 0.673 0.869 骨钙素N-端中分子片段 0.309 0.033 6.928 0.003 1.362 1.155 1.607 β-CTX 0.251 0.012 6.153 0.008 1.285 1.113 1.495 Ⅰ型前胶原氨基端前肽 -0.186 0.016 5.108 0.040 0.830 0.756 0.821 Ⅰ型前胶原羧基端前肽 -0.157 0.011 4.679 0.045 0.855 1.802 0.925 骨碱性磷酸酶 -0.329 0.017 6.517 0.004 0.720 0.614 0.894 TRACP-5b 0.351 0.052 6.802 0.002 1.420 1.295 1.603 常数项 -13.892 1.357 26.463 <0.001 0 — — 校正因素: 性别、年龄、BMI、糖尿病病程以及吸烟史。CTRP3: C1q/肿瘤坏死因子相关蛋白3;
β-CTX: Ⅰ型胶原羧基端肽β-胶原特殊序列; TRACP-5b: 抗酒石酸盐酸性磷酸酶异构体5b。2.4 血清CTRP3对2型糖尿病患者骨质疏松的诊断价值
绘制ROC曲线结果显示,骨密度诊断骨质疏松的曲线下面积(AUC)为0.771(95%CI: 0.731~0.810, P < 0.001), 截断值为0.85 g/cm2, 约登指数为0.42, 灵敏度和特异度分别为76.34%和65.25%; CTRP3诊断骨质疏松的AUC为0.815(95%CI: 0.775~0.856, P < 0.001), 截断值为79.38 ng/mL, 约登指数为0.59, 灵敏度和特异度分别为84.95%和73.75%; 骨密度联合CTRP3诊断骨质疏松的AUC为0.882(95%CI: 0.851~0.920, P < 0.001), 约登指数为0.63, 灵敏度和特异度分别为83.87%和78.75%。骨密度联合CTRP3的诊断价值高于骨密度、CTRP3单独诊断(Z=3.018、2.759, P < 0.05)。见图 1。
3. 讨论
骨质疏松是糖尿病常见并发症,在糖尿病患者中的患病率为20%~40%[12]。中国是糖尿病高发国家, 2019年65岁以上老年糖尿病患者多达3 550万[13], 其中罹患骨质疏松的人群基数十分庞大。糖尿病患者发生骨质疏松会增加临床治疗难度,并可导致病理性骨质发生风险增高。双能X线骨密度测定是诊断骨质疏松的“金标准”,但结果具有滞后性,很多患者确诊时已出现骨痛甚至骨折,延误了治疗最佳时机。骨质疏松是一种可预防、可控的疾病,早期诊断糖尿病患者中的骨质疏松患者并及时干预,可改善患者预后。糖尿病患者骨质疏松发生机制尚不完全清楚,可能与胰岛素作用不足、长期高血糖、糖基化终末产物累积以及慢性炎症等有关[14-15]。
CTRP3是一种与脂联素同源的脂肪因子,属于CTRP家族成员,基因编码含246个氨基酸残基,分子量约为26 kDa, 广泛存在于脂肪组织、软骨等器官组织以及成纤维细胞、软骨细胞等细胞中[16]。研究[17]显示, CTRP3通过调控糖代谢紊乱以及抑制炎症反应参与了代谢性疾病的发生发展。通过加强葡萄糖转运蛋白4和磷酸肌醇3激酶磷酸化, CTRP3可加速胰岛素敏感性[18]。CTRP3还可抑制糖异生并减少葡萄糖合成,调控胰岛β细胞作用可促进胰岛素分泌,最终降低血糖[19]。动物实验[20]证实, CTRP3水平降低会促进肿瘤坏死因子-α(TNF-α)和白细胞介素-6(IL-6)等炎症细胞因子表达而损害糖代谢及胰岛素敏感性。研究[21]还发现,相较于成熟的软骨细胞,在分化的软骨细胞中CTRP3表达量更高,并且外源性CTRP3可促进HCS-2/8软骨细胞以及N1511软骨祖细胞增殖,这种增殖效应呈剂量反应关系。CTRP3也是一种骨骼稳态调节因子,腺苷酸活化蛋白激酶促进CTRP3表达可降低骨质重吸收,抑制破骨细胞生成,延缓骨质疏松。XU Z H等[9]研究显示, CTRP3每降低1 ng/mL, 骨质疏松风险增加1.069倍。基于上述结果以及糖尿病患者骨质疏松发生机制,作者推测CTRP3可能通过介导糖尿病患者糖代谢紊乱途径而促进骨质疏松。
本研究中,合并骨质疏松的糖尿病患者血清CTRP3水平显著低于单纯糖尿病患者,提示CTRP3在继发骨质疏松的糖尿病患者中表达下调; 糖代谢指标FBG、HOMA-IR、FINS、HbA1c与CTRP3呈负相关,骨代谢指标、骨密度与CTRP3也呈不同程度的相关性,该证据支持上述假说,即CTRP3水平降低可导致机体糖代谢紊乱,导致骨代谢障碍而加速了骨质疏松发展。CTRP3降低导致PI3K信号通路受阻,炎症细胞因子大量释放增强胰岛素抵抗并降低胰岛素敏感性,导致骨吸收大于骨形成,骨密度降低而诱发骨质疏松[22-23]。CTRP3降低使胰岛素敏感性降低,血糖水平升高,高血糖导致胰岛素样生长因子合成及释放减少,抑制成骨细胞增殖分化; 高血糖抑制骨钙素分泌,影响骨矿化过程而导致骨矿物质含量和骨密度降低; 高血糖加重渗透性利尿,引起钙磷代谢异常,甲状旁腺功能亢进,增强骨吸收; 高血糖导致骨组织中糖基化终末产物沉积,胶原结构改变,抑制成骨细胞增殖分化,促进破骨活性增强,改变骨细胞数量和功能,导致骨质量下降[24]。本研究发现,性别、年龄、BMI、糖尿病病程等是骨质疏松的影响因素,与既往研究[25-26]结果一致。校正混杂因素后, CTRP3是2型糖尿病患者骨质疏松的保护因素,其水平每升高10 ng/mL, 骨质疏松发生风险降低29.5%。ROC曲线结果显示, CTRP3对骨质疏松具有诊断价值,联合骨密度检测能显著提高诊断效能,提示临床早期检测血清CTRP3水平可以提前诊断骨质疏松发生风险,从而实现早发现、早预防,降低骨质疏松发生率,改善糖尿病患者的预后。
综上所述,血清CTRP3在2型糖尿病合并骨质疏松患者中表达下调, CTRP3通过糖代谢紊乱过程影响骨质疏松发生,早期检测对骨质疏松发生风险具有一定的诊断价值。
-
表 1 DN组和对照组基线资料比较(x±s)[n(%)]
项目 DN组(n=102) 对照组(n=102) t/χ2 P 年龄/岁 59.35±10.19 58.72±10.27 0.440 0.661 男 62(60.78) 57(55.88) 0.504 0.478 女 40(39.22) 45(44.12) 体质量指数/(kg/m2) 25.12±3.06 23.05±2.09 5.642 < 0.001 吸烟史 46(45.10) 42(41.18) 0.320 0.572 饮酒史 39(38.24) 35(34.31) 0.339 0.560 糖尿病肾病遗传史 19(18.63) 15(14.71) 0.565 0.452 高脂血症 32(31.37) 28(27.45) 0.378 0.539 糖尿病病程/年 9.24±2.16 7.92±2.03 4.497 < 0.001 甘油三酯/(mmol/L) 2.35±0.46 2.21±0.37 2.395 0.058 总胆固醇/(mmol/L) 4.52±0.62 4.45±0.69 0.762 0.447 空腹血糖/(mmol/L) 10.02±2.35 8.02±2.07 6.450 < 0.001 糖化血红蛋白/% 9.15±2.03 8.06±1.54 4.320 < 0.001 尿酸/(μmol/L) 362.35±56.95 342.05±47.11 2.774 0.006 尿素氮/(mmol/L) 10.21±2.06 5.59±1.21 19.530 < 0.001 血肌酐/(μmol/L) 90.27±10.41 71.05±6.43 15.864 < 0.001 胱抑素C/(mg/L) 2.06±0.75 0.65±0.21 18.284 < 0.001 估算的肾小球滤过率/[mL/(min·1.73 m2)] 79.77±9.21 106.55±10.13 19.755 < 0.001 表 2 DN组和对照组血清eIF2α和ATF4水平比较(x±s)
pg/mL 组别 n 血清真核细胞翻译启始子2α 活化转录因子4 DN组 102 10.21±2.19* 16.35±3.42* 对照组 102 5.12±1.63 9.15±2.35 与对照组比较, *P < 0.05。 表 3 不同肾损伤程度DN患者血清eIF2α和ATF4水平比较(x±s)
pg/mL 组别 n 血清真核细胞翻译启始子2α 活化转录因子4 MG组 35 9.15±0.67 14.51±0.77 PG组 41 10.32±1.42* 16.43±1.25* RIG组 26 11.46±0.33*# 18.70±0.63 *# 与MG组比较, *P < 0.05; 与PG组比较, #P < 0.05。 表 4 DN患者eIF2α、ATF4与肾功能指标的相关性分析
指标 血清真核细胞翻译启始子2α 活化转录因子4 r P r P 尿素氮 0.321 0.007 0.295 0.012 血肌酐 0.462 < 0.001 0.381 0.003 胱抑素C 0.511 < 0.001 0.439 < 0.001 估算的肾小球滤过率 -0.652 < 0.001 -0.512 < 0.001 表 5 DN发病的Logistic回归方程分析
变量 β SE Wald χ2 OR(95%CI) P 常数项 11.462 3.062 14.012 — < 0.001 糖尿病病程 1.352 0.379 12.726 3.865(1.839~8.124) < 0.001 体质量指数 0.632 0.213 8.804 1.881(1.239~2.856) 0.016 血清真核细胞翻译启始子2α 0.802 0.302 7.052 2.230(1.234~4.031) 0.021 活化转录因子4 0.512 0.198 6.687 1.669(1.132~2.460) 0.034 表 6 eIF2α、ATF4诊断DN的ROC曲线参数
指标 曲线下面积(95%CI) 临界值 灵敏度/% 特异度/% 约登指数 eIF2α 0.770(0.706~0.826) 7.15 pg/mL 78.43 75.49 0.539 ATF4 0.799(0.737~0.851) 12.06 pg/mL 80.39 78.43 0.588 联合诊断 0.879(0.827~0.921) 0.48 pg/mL 94.12 83.33 0.775 -
[1] ZHANG L X, LONG J Y, JIANG W S, et al. Trends in chronic kidney disease in China[J]. N Engl J Med, 2016, 375(9): 905-906. doi: 10.1056/NEJMc1602469
[2] SAMSU N. Diabetic nephropathy: challenges in pathogenesis, diagnosis, and treatment[J]. Biomed Res Int, 2021, 2021: 1497449.
[3] KOPEL J, PENA-HERNANDEZ C, NUGENT K. Evolving spectrum of diabetic nephropathy[J]. World J Diabetes, 2019, 10(5): 269-279. doi: 10.4239/wjd.v10.i5.269
[4] XIE Y F, JING J, CAI H, et al. Reticulon-1A mediates diabetic kidney disease progression through endoplasmic reticulum-mitochondrial contacts in tubular epithelial cells[J]. Kidney Int, 2022, 102(2): 293-306. doi: 10.1016/j.kint.2022.02.038
[5] CNOP M, TOIVONEN S, IGOILLO-ESTEVE M, et al. Endoplasmic reticulum stress and eIF2α phosphorylation: the Achilles heel of pancreatic β cells[J]. Mol Metab, 2017, 6(9): 1024-1039. doi: 10.1016/j.molmet.2017.06.001
[6] LUO B, LIN Y, JIANG S, et al. Endoplasmic reticulum stress eIF2α-ATF4 pathway-mediated cyclooxygenase-2 induction regulates cadmium-induced autophagy in kidney[J]. Cell Death Dis, 2016, 7(6): e2251. doi: 10.1038/cddis.2016.78
[7] 中华医学会糖尿病学分会. 中国2型糖尿病防治指南(2017年版)[J]. 中国实用内科杂志, 2018, 38(4): 292-344. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-HBYX202112018.htm [8] THIPSAWAT S. Early detection of diabetic nephropathy in patient with type 2 diabetes mellitus: a review of the literature[J]. Diab Vasc Dis Res, 2021, 18(6): 14791641211058856.
[9] TANIGUCHI M, YOSHIDA H. Endoplasmic reticulum stress in kidney function and disease[J]. Curr Opin Nephrol Hypertens, 2015, 24(4): 345-350. doi: 10.1097/MNH.0000000000000141
[10] LI Z X, GE Y, DONG J, et al. BZW1 facilitates glycolysis and promotes tumor growth in pancreatic ductal adenocarcinoma through potentiating eIF2α phosphorylation[J]. Gastroenterology, 2022, 162(4): 1256-1271. e14. doi: 10.1053/j.gastro.2021.12.249
[11] YANG S Y, HU L H, WANG C L, et al. PERK-eIF2α-ATF4 signaling contributes to osteogenic differentiation of periodontal ligament stem cells[J]. J Mol Histol, 2020, 51(2): 125-135. doi: 10.1007/s10735-020-09863-y
[12] GUO Y Z, GUO R, SU Y X, et al. The PERK/eIF2α/ATF4/CHOP pathway plays a role in regulating monocrotaline-induced endoplasmic reticulum stress in rat liver[J]. Res Vet Sci, 2020, 130: 237-239. doi: 10.1016/j.rvsc.2020.03.021
[13] FAN C L, YAO Z H, YE M N, et al. Fuziline alleviates isoproterenol-induced myocardial injury by inhibiting ROS-triggered endoplasmic reticulum stress via PERK/eIF2α/ATF4/Chop pathway[J]. J Cell Mol Med, 2020, 24(2): 1332-1344. doi: 10.1111/jcmm.14803
[14] ZHAO C J, YU D, HE Z Q, et al. Endoplasmic reticulum stress-mediated autophagy activation is involved in cadmium-induced ferroptosis of renal tubular epithelial cells[J]. Free Radic Biol Med, 2021, 175: 236-248. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2021.09.008
[15] MASUDA M, MIYAZAKI-ANZAI S, LEVI M, et al. PERK-eIF2α-ATF4-CHOP signaling contributes to TNFα-induced vascular calcification[J]. J Am Heart Assoc, 2013, 2(5): e000238. doi: 10.1161/JAHA.113.000238
[16] LIANG Q E, BAI Z Y, XIE T, et al. Deciphering the pharmacological mechanisms of qidan Dihuang Decoction in ameliorating renal fibrosis in diabetic nephropathy through experimental validation in vitro and in vivo[J]. Evid Based Complement Alternat Med, 2022, 2022: 4137578.
[17] PAKOS-ZEBRUCKA K, KORYGA I, MNICH K, et al. The integrated stress response[J]. EMBO Rep, 2016, 17(10): 1374-1395. doi: 10.15252/embr.201642195
[18] MAI X Y, YIN X, CHEN P P, et al. Salvianolic acid B protects against fatty acid-induced renal tubular injury via inhibition of endoplasmic reticulum stress[J]. Front Pharmacol, 2020, 11: 574229. doi: 10.3389/fphar.2020.574229
[19] XU X H, CHEN B, HUANG Q C, et al. The effects of puerarin on autophagy through regulating of the PERK/eIF2α/ATF4 signaling pathway influences renal function in diabetic nephropathy[J]. Diabetes Metab Syndr Obes, 2020, 13: 2583-2592. doi: 10.2147/DMSO.S256457
-
期刊类型引用(3)
1. 刘宏娜,李晓宇,宋爱霞,常青,孙健,薛茜. 急性脑梗死患者血清CTRP3及CTRP9水平与颈总动脉内膜中层厚度的相关性分析. 临床和实验医学杂志. 2024(11): 1153-1156 . 百度学术
2. 余茜琼,张秋妹,陈立然. 血红蛋白糖化指数联合血清C肽在2型糖尿病诊断中的应用价值分析. 糖尿病新世界. 2024(11): 41-44 . 百度学术
3. 黄茜,申琴,胡秋云,孙静,万平印. 血清CTRP3、DKK-1水平在绝经后骨质疏松患者骨折发生中的临床价值. 检验医学. 2024(10): 950-955 . 百度学术
其他类型引用(0)