Impact of lidocaine on the chemotherapy sensitivity of gastric cancer cells via regulating Wnt/β-catenin axis
-
摘要:目的
探讨利多卡因调控Wnt/β-连环蛋白(β-catenin)轴对胃癌细胞化疗敏感性的影响。
方法将对数生长期的人胃癌细胞SGC-7901接种于96孔板中,用不同浓度利多卡因(0、10、50、100、150、200 μmol/L)处理24 h, 比较不同浓度下的细胞活力。将对数生长期SGC-7901细胞分为对照组(Control组)、顺铂组(Cisplatin组)、利多卡因低浓度组(Lido-L组)、利多卡因中浓度组(Lido-M组)、利多卡因高浓度组(Lido-H组)、利多卡因高浓度+Wnt/β-catenin信号通路激活剂SKL2001组(Lido-H+SKL2001组),通过5-乙炔基-2'脱氧尿嘧啶核苷(EdU)细胞增殖检测、Transwell法和划痕愈合实验分别比较各组细胞增殖、侵袭和迁移能力,使用TUNEL试剂盒检测各组细胞凋亡情况,并检测各组细胞凋亡、上皮-间质转化、Wnt/β-catenin通路相关蛋白的表达情况。
结果与0 μmol/L利多卡因相比, 50、100、150、200 μmol/L利多卡因处理的SGC-7901细胞活力均降低,差异有统计学意义(P<0.05)。与Control组相比, Cisplatin组EdU阳性率、细胞侵袭数、划痕愈合率和波形蛋白(Vimentin)、N-钙黏蛋白(N-cadherin)、B细胞淋巴瘤相关蛋白-2(Bcl-2)、细胞周期蛋白D1(cyclin D1)、散乱蛋白2(DVL2)、Wnt家族成员3a(Wnt3a)、β-连环蛋白(β-catenin)表达降低,细胞凋亡率升高,E-钙黏蛋白(E-cadherin)、B细胞淋巴瘤-2相关X蛋白(Bax)、裂解半胱天冬酶-3(Cleaved-Caspase-3)表达增加,差异有统计学意义(P<0.05); 与Cisplatin组相比, Lido-L组、Lido-M组、Lido-H组EdU阳性率、细胞侵袭数、划痕愈合率和Vimentin、N-cadherin、Bcl-2、Cyclin Dl、DVL2、Wnt3a、β-catenin表达逐渐降低,细胞凋亡率逐渐升高, E-cadherin、Bax、Cleaved-caspase-3表达逐渐增加,差异有统计学意义(P<0.05); 与Lido-H组相比, Lido-H+SKL2001组EdU阳性率、细胞侵袭数、划痕愈合率和Vimentin、N-cadherin、Bcl-2、Cyclin Dl、DVL2、Wnt3a、β-catenin表达升高,细胞凋亡率和E-cadherin、Bax、Cleaved-caspase-3表达降低,差异有统计学意义(P<0.05)。
结论利多卡因可能通过抑制Wnt/β-catenin轴的激活而增强胃癌细胞化疗敏感性。
-
关键词:
- 利卡多因 /
- Wnt/β-连环蛋白 /
- 信号通路 /
- 胃癌 /
- 化疗敏感性
Abstract:ObjectiveTo investigate the effect of lidocaine on the chemotherapy sensitivity of gastric cancer cells by regulating the Wnt/β-catenin axis.
MethodsHuman gastric cancer cells SGC-7901 in logarithmic growth phase were inoculated into 96-well plates and treated with different concentrations of lidocaine (0, 10, 50, 100, 150, 200 μmol/L) for 24 h. The cell viability at different concentrations was compared. The SGC-7901 cells in logarithmic growth phase were divided into control group, cisplatin group, low concentration lidocaine group (Lido-L group), medium concentration lidocaine group (Lido-M group), high concentration lidocaine group (Lido-H group), high concentration lidocaine + Wnt/β-catenin signal pathway activator SKL2001 group (Lido-H+SKL2001 group). The cell proliferation, invasion, and migration abilities of each group were compared by 5-acetylidene-2'deoxyuracil nucleoside (EdU) cell proliferation detection, Transwell assay, and scratch healing experiment. The apoptosis of each group was detected by TUNEL assay. The expressions of apoptosis, epithelial-mesenchymal transition, and Wnt/β-catenin pathway-related proteins in each group were detected.
ResultsCompared with 0 μmol/L lidocaine, the cell viability of SGC-7901 cells treated with 50, 100, 150, and 200 μmol/L lidocaine was reduced (P < 0.05). Compared with the control group, the EdU positive rate, the number of cell invasion, scratch healing rate, and expressions of vimentin, N-cadherin, B-cell lymphoma-associated protein-2 (Bcl-2), cyclin D1, scattered protein 2 (DVL2), Wnt family member 3a (Wnt3a), β-catenin (β-catenin) were reduced in the cisplatin group, while the cell apoptosis rate was increased, the expressions of E-cadherin, B-cell lymphoma-2-associated X protein (Bax), Cleaved-caspase-3 were increased, and the differences were statistically significant (P < 0.05). Compared with the cisplatin group, the EdU positive rate, the number of cell invasion, scratch healing rate, and expressions of vimentin, N-cadherin, Bcl-2, cyclin Dl, DVL2, Wnt3a, β-catenin were gradually reduced in the Lido-L group, Lido-M group, and Lido-H group, while the cell apoptosis rate, the expressions of E-cadherin, B-cell lymphoma-2-associated X protein (Bax), Cleaved-caspase-3 were increased (P < 0.05). Compared with the Lido-H group, the EdU positive rate, the number of cell invasion, scratch healing rate, and expressions of vimentin, N-cadherin, Bcl-2, cyclin Dl, DVL2, Wnt3a, β-catenin were increased in the Lido-H+SKL2001 group, while the cell apoptosis rate and expressions of E-cadherin, Bax, Cleaved-caspase-3 were reduced, the differences were statistically significant (P < 0.05).
ConclusionLidocaine may enhance the chemotherapy sensitivity of gastric cancer cells by inhibiting the activation of the Wnt/β-catenin axis.
-
Keywords:
- lidocaine /
- Wnt/β-catenin /
- signal pathway /
- gastric cancer /
- chemotherapy sensitivity
-
慢性心力衰竭是各种心脏疾病的终末阶段,其发病率、病死率及再住院率较高,严重影响患者的生存质量[1]。射血分数降低的心力衰竭(HFrEF)患者的心功能及预后更差[2]。应用血管紧张素转换酶(ACE)抑制剂治疗HFrEF已被临床公认,而血管紧张素受体阻滞剂(ARBs)是一种安全可靠的替代药物[3]。血管紧张素受体脑啡肽酶抑制剂(ARNI)[4-6]可作用于肾素-血管紧张素-醛固酮系统(RAAS)和中性内肽酶系统。MCMURRAY J J等[7]研究发现,沙库巴曲缬沙坦组HFrEF患者心力衰竭住院率和死亡率低于依那普利组。利钠肽可抑制肾素和醛固酮的分泌,选择性阻断血管紧张素Ⅱ的1型(AT1)受体,进而减少血管收缩、水钠潴留,延缓心肌肥厚[8]。目前,关于沙库巴曲缬沙坦对超声心动图参数及左室重构的影响的数据很少[9-10]。本研究评估沙库巴曲缬沙坦对HFrEF患者超声参数及左室重构的影响,现报告如下。
1. 资料与方法
1.1 一般资料
选取2018年7月—2020年12月在苏州市第九人民医院心内科住院治疗的50例慢性HFrEF患者为研究对象。纳入标准: ①年龄≥18岁者; ②纽约心脏病协会(NYHA)分级Ⅱ~Ⅳ级者; ③射血分数 < 40%者; ④患者在入组前12个月内因心力衰竭住院; ⑤未服用任何ACE抑制剂或ARB的患者; ⑥服用稳定剂量β-受体阻滞剂、ACE抑制剂或ARB至少4周的患者; ⑦签署知情同意书者。排除标准: ①症状性低血压、收缩压 < 100.0 mmHg者; ②估计肾小球滤过率(eGFR) < 30.0 mL/(min·1.73 m2)者; ③筛查时血清钾水平>5.2 mmol/L者; ④血管性水肿病史者; ⑤ ACE抑制剂或ARB治疗下出现副作用者; ⑥可纠正的瓣膜病者; ⑦ 3个月内急性冠状动脉综合征者; ⑧ 3个月内冠状动脉血管重建术者。基于既往研究[10-12]结果,左室射血分数(LVEF)改善>5%定义为对沙库巴曲缬沙坦有显著反应。
1.2 研究步骤
为了将ACE和脑啡肽酶抑制作用引起的血管性水肿的风险降至最低,在开始使用沙库巴曲缬沙坦之前,停用ACE抑制剂至少36 h。禁止使用ACE抑制剂或ARB与沙库巴曲缬沙坦联合治疗,患者在开始使用沙库巴曲缬沙坦前需接受临床检查以及超声心动图和彩色多普勒超声评估,在3个月时重复相同的检查,采用NYHA分级进行心功能评价。
1.3 超声心动图评估
超声心动图检查由1名对患者状态设盲的超声科医师实施,常规超声心动图检查在患者使用沙库巴曲缬沙坦治疗前24~72 h进行,并在沙库巴曲缬沙坦治疗后3个月时重复评估[13]。
1.3.1 左心室彩色多普勒超声评估
在左心室二维超声心动图成像上评价左室收缩功能,使用M模式在乳头肌水平测量胸骨旁长轴视图下左室舒张末期内径(LVEDD)以及左室收缩末期内径(LVESD), 然后用双平面法测量左室收缩末期容积(LVESV)、左室舒张末期容积(LVEDV)。评估E波和A波的峰值,计算E/A比值和E波减速时间。离线彩色编码组织多普勒成像使用心尖四腔视图,将样本置于二尖瓣间隔和外侧二尖瓣环上,计算舒张早期速度(E′)和舒张末期速度(A′)。计算二尖瓣间隔和二尖瓣外侧环的平均E′速度,计算E/E′比值。根据指南对每个患者的左室舒张功能不全进行分级,在心尖四腔和二腔测量LA最大容积指数(mL/m2), 用传统的超声心动图标记评估二尖瓣反流。
1.3.2 右心室彩色多普勒超声评估
应用二维心尖四腔视图观察右心室的容积和收缩力,计算右心室面积变化百分比。从三尖瓣瓣环沿游离壁描记心内膜心肌轮廓至心尖部,然后沿室间隔描记回瓣环。采用M型图像获得三尖瓣环平面收缩偏移(TAPSE)。将M型光标定位在三尖瓣平面与右室游离壁的交界处,计算三尖瓣环从舒张末期到收缩末期的总位移。评价右心室功能指数(MPI), 检测三尖瓣关闭开放时间(TCO), 包括等容收缩时间、射血时间(ET)和等容舒张时间。评估纵向偏移速度(S′), S′ < 10 cm/s是定义RV功能异常的临界值,使用简化的Bernoulli方程[11]测量收缩期间右心室与右心房之间的压力梯度。
1.4 统计学分析
采用SPSS 21.0软件进行数据分析,所有临床变量在纳入时进行评估,在沙库巴曲缬沙坦开始使用前,由1名对患者状态设盲的高年资超声科医师评估超声参数,并在治疗3个月后重复进行。连续变量用平均值(标准差或四分位数表示,使用非配对Student′s t检验或Mann-Whitney检验对患者组之间的连续变量进行比较,分类变量用卡方检验或Fisher精确检验进行比较, P < 0.05为差异有统计学意义。
2. 结果
2.1 患者人口学资料
本研究最初纳入50例患者,研究期间7例不耐受沙库巴曲缬沙坦治疗而被剔除,最终完成研究的患者43例。43例患者年龄(70.0±10.0)岁,女12例,男31例; 合并高血压25例,合并糖尿病15例; 有吸烟史8例,高胆固醇血症21例; 特发性心力衰竭18例,缺血性心力衰竭25例; NYHA分级Ⅱ级15例, Ⅲ级28例; 32例沙库巴曲缬沙坦最大剂量200 mg/d, 11例沙库巴曲缬沙坦平均剂量100 mg/d。
2.2 沙库巴曲缬沙坦治疗前后的超声参数比较
43例患者治疗前后的LVEF、LVESV、LVEDD、速度时间分积(IVT)、右室收缩压比较,差异均有统计学意义(P < 0.01)。见表 1。
表 1 43例患者沙库巴曲缬沙坦治疗前后超声参数比较(x±s)指标 治疗前 治疗后 LVEF/% 32.6±5.3 36.2±6.5** LVEDV/mL 172.7±50.0 166.0±58.8 LVESV/mL 117.6±41.5 108.9±46.1** LVEDD/mm 60.3±5.4 57.1±5.7** LVESD/mm 49.1±7.4 48.5±6.5 IVT/cm2 16.5±0.3 17.8±0.8** E/A 1.1±0.6 1.0±0.5 心脏指数/[L/(min·m2)] 2.3±0.3 2.4±0.4 右室收缩压/mmHg 39.1±10.4 32.5±8.4** RVEDD/mm 31.3±4.5 31.0±4.6 BDRV直径/mm 41.2±6.5 41.6±6.2 TAPSE/mm 18.0±4.0 18.4±4.5 RVFS/% 36.6±6.2 38.0±6.2 LVEF: 左室射血分数; LVEDV: 左室舒张末期容积;
LVESV: 左室收缩末期容积; LVEDD: 左室舒张末期内径;
LVESD: 左室收缩末期内径; IVT: 速度时间分积;
E/A: E峰与A峰比值; RVEDD: 右室舒张末期内径;
BDRV: 基础右室内径; TAPSE: 三尖瓣环平面收缩偏移;
RVFS: 右室缩短分数。与治疗前比较, **P < 0.01。2.3 不同超声反应患者资料比较
沙库巴曲缬沙坦治疗后超声有反应者19例,表现为较轻的左室重构,超声无反应者24例。有反应组与无反应组LVEDV、LVESV、LVEDD、二尖瓣反流比率比较,差异均有统计学意义(P < 0.05或P < 0.01)。沙库巴曲缬沙坦反应对左室舒张功能或右室参数无影响。见表 2。
表 2 沙库巴曲缬沙坦超声有反应组与无反应组相关参数比较(x±s)[n(%)]指标 有反应组(n=19) 无反应组(n=24) 年龄/岁 72.0±11.0 69.0±10.0 女性 7(36.8) 5(20.8) LVEF/% 34.6±4.7 36.0±2.7 LVEDV/mL 144.0±37.9 193.3±48.7** LVESV/mL 96.6±28.0 133.1±42.8** LVEDD/mm 57.5±5.0 61.4±4.2** LVESD/mm 48.8±5.6 50.2±9.6 IVT/cm2 16.2±4.2 17.4±3.5 E/A 1.2±0.7 1.0±0.6 心脏指数/[L/(min·m2)] 2.4±0.5 2.3±0.4 右室收缩压/mmHg 36.6±8.5 41.5±11.4 RVEDD/mm 30.5±4.0 31.1±4.5 BDRV直径/mm 41.5±6.0 41.1±5.6 TAPSE/mm 19.3±3.6 17.5±4.0 二尖瓣反流 6(31.6) 17(70.8)* 与有反应组比较, *P < 0.05, **P < 0.01。 2.4 沙库巴曲缬沙坦不耐受原因
本研究剔除的7例不耐受沙库巴曲缬沙坦治疗患者的血清肌酐水平为(136.0±99.0) μmol/L, 高于43例正常接受沙库巴曲缬沙坦治疗患者的(103.0±25.0) μmol/L, 差异有统计学意义(P=0.03)。右室超声参数、心力衰竭病因不影响沙库巴曲缬沙坦的反应或耐受性。
3. 讨论
2015年,美国食品药品监督管理局(FDA)批准沙库巴曲缬沙坦可用于慢性心力衰竭患者的治疗。随着循证医学数据的积累, 2017年美国心力衰竭指南[14]推荐LVEF < 40%的心力衰竭患者可使用LCZ696[单一物质中结合缬沙坦(ARB)和沙库巴曲(脑啡肽酶抑制剂)的分子]治疗,推荐心功能Ⅱ~Ⅲ级、可以耐受ACEI/ARB治疗的HFrEF患者采用LCZ696治疗。尽管沙库巴曲缬沙坦可显著降低HFrEF患者的发病率和死亡率,但有关其影响左室重塑及相应心脏超声心动图变化的研究仍较少见。本研究表明,沙库巴曲缬沙坦对曾接受ACE抑制剂治疗的HFrEF患者的左室重构和右室收缩压有额外的作用,沙库巴曲缬沙坦有反应者表现出较轻的左室重构和较低的二尖瓣反流发生率。
血管紧张素受体-脑啡肽酶抑制剂复合物是治疗HFrEF患者的一类新型药物。脑啡肽酶是一种膜结合内肽酶,可水解心房利钠肽、脑利钠肽和C型利钠肽以及其他内源性血管舒张肽[15], 抑制脑啡肽酶能够升高利钠肽水平,从而获得利钠肽效应和血管扩张等潜在益处[16]。沙库巴曲缬沙坦双重抑制RAAS和脑啡肽酶系统,能减轻血管紧张素Ⅱ介导的心肌细胞纤维化,发挥抗增殖和抗肥厚的作用[15-16]。既往研究[17]曾对ACE和脑啡肽酶抑制剂联合用药进行了试验,但由于缓激肽水平异常增加导致的血管性水肿的发生风险升高,所以药物试验被中止。目前,沙库巴曲缬沙坦对结构重塑的作用尚未得到充分证实,而事实上左室重构是HFrEF患者疾病进展的潜在主要机制[18]。最近一项前瞻性随机研究[9]表明,血管紧张素受体脑啡肽酶抑制剂比ARBs可更有效地改善心力衰竭相关的二尖瓣反流。作者发现,与缬沙坦相比,沙库巴曲缬沙坦可进一步缩小有效反流口面积,降低左室舒张末期容积指数、左房容积指数和二尖瓣血流速度与二尖瓣环舒张速度比值(E/E′)。一项回顾性研究[10]也发现,接受沙库巴曲缬沙坦3个月中位治疗时间的患者的LVEF、左室收缩末期内径、左室舒张末期内径及左室质量指数有明显改善。本研究采用前瞻性设计评估沙库巴曲缬沙坦对左室重构的影响,结果表明,沙库巴曲缬沙坦能够对左室结构重塑带来获益。
沙库巴曲缬沙坦起初被特定用于HFrEF患者治疗,预期研究成果及效应的评估可基于临床指标和超声心动图标准。虽然研究纳入了临床基本资料,如年龄、种族、合并症以及较低剂量用药,但这些因素对沙库巴曲缬沙坦的总体效果没有产生影响[19]。本研究尝试进一步确定影响左室射血分数改善的临床或超声因素。基于既往研究[10-12], LVEF绝对改善>5%被认为有临床意义,定义为沙库巴曲缬沙坦有反应。本研究发现,与无反应者相比,沙库巴曲缬沙坦超声有反应者表现出较低的LVEDV、LVESV, 反映出较轻的左室重构; 与无反应者相比,沙库巴曲缬沙坦有反应者二尖瓣反流比率更低,未发现左室舒张功能或右室参数影响沙库巴曲缬沙坦反应。目前,沙库巴曲缬沙坦对超声左室重塑影响的研究仅有一项前瞻性研究[20]。本研究发现,使用LCZ696时,即使已经使用ACE抑制剂治疗的患者, LVEF也有望得到显著改善。因此,沙库巴曲缬沙坦对左室重构的改善可能是由于抑制脑啡肽酶的额外作用,抑制脑啡肽酶升高利钠肽的这种补充作用改善了左心室功能。
综上所述,在HFrEF患者中,沙库巴曲缬沙坦可显著改善左室收缩重构,对左室舒张功能或右室超声参数无显著影响。沙库巴曲缬沙坦有反应者表现出较轻的左室重构和较低的二尖瓣反流比率。因此,沙库巴曲缬沙坦可在早期用于HFrEF患者的治疗,以进一步限制左室重构。
-
表 1 不同浓度利多卡因对SGC-7901细胞活力的影响(x±s)
% 利多卡因浓度/(μmol/L) n 细胞活力 0 6 100.00±0 10 6 93.28±6.12 50 6 85.64±5.37* 100 6 74.93±4.01* 150 6 63.78±3.85* 200 6 52.32±3.41* F 108.925 P <0.001 与0 μmol/L比较, *P<0.05。 表 2 各组SGC-7901细胞EdU阳性率比较(x±s)
% 组别 n EdU阳性率 Control组 6 53.46±5.24 Cisplatin组 6 42.61±3.02* Lido-L组 6 32.09±2.86# Lido-M组 6 24.74±2.07#△ Lido-H组 6 15.85±2.43#△▲ Lido-H+SKL2001组 6 28.52±3.19▽ F 98.854 P <0.001 与Control组比较, *P<0.05; 与Cisplatin组比较, #P<0.05;
与Lido-L组比较, △P<0.05; 与Lido-M组比较, ▲P<0.05;
与Lido-H组比较, ▽P<0.05。表 3 各组SGC-7901细胞侵袭数和细胞划痕愈合率比较(x±s)
组别 n 细胞侵袭数/个 细胞划痕愈合率/% Control组 6 166.33±10.53 87.63±7.16 Cisplatin组 6 141.67±8.47* 74.28±5.68* Lido-L组 6 110.90±6.34# 60.65±4.01# Lido-M组 6 94.73±6.86#△ 48.32±4.11#△ Lido-H组 6 74.53±3.37#△▲ 34.71±2.94#△▲ Lido-H+SKL2001组 6 97.30±4.08▽ 43.10±3.22▽ F 138.291 106.691 P <0.001 <0.001 与Control组比较, *P<0.05; 与Cisplatin组比较, #P<0.05;
与Lido-L组比较, △P<0.05; 与Lido-M组比较, ▲P<0.05;
与Lido-H组比较, ▽P<0.05。表 4 各组SGC-7901细胞凋亡率及凋亡相关蛋白表达比较(x±s)
组别 n 细胞凋亡率/% Bax Bcl-2 Cleaved-caspase-3 Control组 6 3.28±0.12 0.35±0.03 1.15±0.10 0.12±0.02 Cisplatin组 6 14.52±1.34* 0.51±0.03* 0.96±0.06* 0.28±0.03* Lido-L组 6 26.48±2.76# 0.76±0.05# 0.61±0.05# 0.50±0.04# Lido-M组 6 37.53±3.23#△ 0.93±0.03#△ 0.36±0.04#△ 0.76±0.06#△ Lido-H组 6 52.66±7.01#△▲ 1.17±0.09#△▲ 0.21±0.03#△▲ 0.94±0.08#△▲ Lido-H+SKL2001组 6 45.58±4.79▽ 1.08±0.06▽ 0.32±0.05▽ 0.81±0.06▽ F 139.301 221.709 245.784 227.818 P <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 Bax: B细胞淋巴瘤-2相关X蛋白; Bcl-2: B细胞淋巴瘤相关蛋白-2; Cleaved-caspase-3: 裂解半胱天冬酶-3。
与Control组比较, *P<0.05; 与Cisplatin组比较, #P<0.05; 与Lido-L组比较, △P<0.05;
与Lido-M组比较, ▲P<0.05; 与Lido-H组比较, ▽P<0.05。表 5 各组SGC-7901细胞EMT相关蛋白表达比较(x±s)
组别 n E-cadherin N-cadherin Vimentin Control组 6 0.43±0.02 0.94±0.07 1.28±0.10 Cisplatin组 6 0.55±0.03* 0.85±0.05* 1.15±0.08* Lido-L组 6 0.68±0.05# 0.67±0.04# 1.01±0.06# Lido-M组 6 0.79±0.04#△ 0.52±0.04#△ 0.87±0.05#△ Lido-H组 6 0.91±0.06#△▲ 0.36±0.01#△▲ 0.62±0.06#△▲ Lido-H+SKL2001组 6 0.83±0.05▽ 0.45±0.03▽ 0.75±0.05▽ F 103.231 222.979 77.471 P <0.001 <0.001 <0.001 E-cadherin: E-钙黏蛋白; N-cadherin: N-钙黏蛋白; Vimentin: 波形蛋白。与Control组比较, *P<0.05;
与Cisplatin组比较, #P<0.05; 与Lido-L组比较, △P<0.05; 与Lido-M组比较, ▲P<0.05; 与Lido-H组比较, ▽P<0.05。表 6 各组SGC-7901细胞相关蛋白表达情况比较(x±s)
组别 n Cyclin Dl DVL2 Wnt3a β-catenin Control组 6 1.35±0.11 0.89±0.07 1.02±0.08 0.57±0.06 Cisplatin组 6 1.18±0.06* 0.69±0.05* 0.85±0.05* 0.46±0.03* Lido-L组 6 1.02±0.05# 0.53±0.04# 0.69±0.04# 0.34±0.03# Lido-M组 6 0.85±0.05#△ 0.45±0.03#△ 0.53±0.05#△ 0.27±0.02#△ Lido-H组 6 0.64±0.04#△▲ 0.26±0.02#△▲ 0.37±0.02#△▲ 0.12±0.01#△▲ Lido-H+SKL2001组 6 0.76±0.05▽ 0.33±0.02▽ 0.45±0.03▽ 0.25±0.03▽ F 104.032 184.609 156.730 136.112 P <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 Cyclin Dl: 周期蛋白D1; DVL2: 散乱蛋白2; Wnt3a: Wnt家族成员3a; β-catenin: β-连环蛋白。与Control组比较, *P<0.05;
与Cisplatin组比较, #P<0.05; 与Lido-L组比较, △P<0.05; 与Lido-M组比较, ▲P<0.05; 与Lido-H组比较, ▽P<0.05。 -
[1] THRIFT A P, EL-SERAG H B. Burden of gastric cancer[J]. Clin Gastroenterol Hepatol, 2020, 18(3): 534-542. doi: 10.1016/j.cgh.2019.07.045
[2] 邢智, 张转, 孙建宏. 利多卡因在胸腔镜肺癌手术中的应用进展[J]. 实用临床医药杂志, 2021, 25(1): 121-124. doi: 10.7619/jcmp.20200575 [3] GUAN E J, LIU H R, XU N. Lidocaine suppresses gastric cancer development through Circ_ANO5/miR-21-5p/LIFR axis[J]. Dig Dis Sci, 2022, 67(6): 2244-2256. doi: 10.1007/s10620-021-07055-6
[4] 谢玉海, 朵海珍, 王学军. 利多卡因通过LncRNA H19/miR-671-5p分子轴调控胃癌细胞增殖、迁移及侵袭[J]. 中国免疫学杂志, 2022, 38(12): 1475-1479. doi: 10.3969/j.issn.1000-484X.2022.12.012 [5] 孙贺, 李展. 利多卡因调控微小RNA-195对骨肉瘤MG63细胞增殖、凋亡及化疗敏感性的影响[J]. 安徽医药, 2022, 26(5): 869-873. [6] LIU J Q, XIAO Q, XIAO J N, et al. Wnt/β-catenin signalling: function, biological mechanisms, and therapeutic opportunities[J]. Signal Transduct Target Ther, 2022, 7(1): 3. doi: 10.1038/s41392-021-00762-6
[7] TIAN S, PENG P L, LI J, et al. SERPINH1 regulates EMT and gastric cancer metastasis via the Wnt/β-catenin signaling pathway[J]. Aging, 2020, 12(4): 3574-3593. doi: 10.18632/aging.102831
[8] 于彬, 于勇, 时磊, 等. 扁蒴藤素对肝细胞癌细胞生物学行为及吉西他滨化疗敏感性的影响[J]. 中国普通外科杂志, 2023, 32(2): 221-230. [9] 王啸飞, 路夷平. 多形性腺瘤基因样因子2在胃癌组织中的表达及其影响胃癌细胞侵袭、上皮-间充质转化的机制[J]. 中华实验外科杂志, 2019, 36(3): 432-435. [10] SEXTON R E, AL HALLAK M N, DIAB M, et al. Gastric cancer: a comprehensive review of current and future treatment strategies[J]. Cancer Metastasis Rev, 2020, 39(4): 1179-1203. doi: 10.1007/s10555-020-09925-3
[11] ZHANG C H, XIE C Y, LU Y. Local anesthetic lidocaine and cancer: insight into tumor progression and recurrence[J]. Front Oncol, 2021, 11: 669746. doi: 10.3389/fonc.2021.669746
[12] ZENG W, XING Z T, TAN M Y, et al. Lidocaine suppresses the malignant behavior of gastric cancer cells via the c-Met/c-Src pathway[J]. Exp Ther Med, 2021, 21(5): 424. doi: 10.3892/etm.2021.9868
[13] DASARI S, NJIKI S, MBEMI A, et al. Pharmacological effects of cisplatin combination with natural products in cancer chemotherapy[J]. Int J Mol Sci, 2022, 23(3): 1532. doi: 10.3390/ijms23031532
[14] PERMATASARI H K, WEWENGKANG D S, TERTIANA N I, et al. Anti-cancer properties of Caulerpa racemosa by altering expression of Bcl-2, BAX, cleaved caspase 3 and apoptosis in HeLa cancer cell culture[J]. Front Oncol, 2022, 12: 964816. doi: 10.3389/fonc.2022.964816
[15] WANG X K, ZHANG Y W, WANG C M, et al. METTL16 promotes cell proliferation by up-regulating cyclin D1 expression in gastric cancer[J]. J Cell Mol Med, 2021, 25(14): 6602-6617. doi: 10.1111/jcmm.16664
[16] ZHANG Y, ZHANG J Q, ZHANG T, et al. Calycosin induces gastric cancer cell apoptosis via the ROS-mediated MAPK/STAT3/NF-κB pathway[J]. Onco Targets Ther, 2021, 14: 2505-2517. doi: 10.2147/OTT.S292388
[17] ZHANG X M, GU G F, LI X F, et al. Lidocaine alleviates cisplatin resistance and inhibits migration of MGC-803/DDP cells through decreasing miR-10b[J]. Cell Cycle, 2020, 19(19): 2530-2537. doi: 10.1080/15384101.2020.1809914
[18] LI J R, ZHAO R, GUO Y L, et al. EMG1 interacts with NOP14 to regulate the growth, migration, and invasion of melanoma cells via the Wnt/β-catenin pathway[J]. Transl Cancer Res, 2020, 9(5): 3669-3679. doi: 10.21037/tcr.2020.03.79
[19] WANG Y, ZHENG L X, SHANG W J, et al. Wnt/beta-catenin signaling confers ferroptosis resistance by targeting GPX4 in gastric cancer[J]. Cell Death Differ, 2022, 29(11): 2190-2202. doi: 10.1038/s41418-022-01008-w
[20] DEMIRCI U, ORENAY-BOYACIOGLU S, KASAP E, et al. Overexpressions of RHOA, CSNK1A1, DVL2, FZD8, and LRP5 genes enhance gastric cancer development in the presence of Helicobacter pylori[J]. Arab J Gastroenterol, 2023, 24(2): 91-97. doi: 10.1016/j.ajg.2023.01.004
[21] HE R F, CHEN Y, QIAN C Y, et al. Dishevelled segment polarity protein 2 promotes gastric cancer progression through Wnt/β-catenin pathway[J]. Tissue Cell, 2023, 82: 102119. doi: 10.1016/j.tice.2023.102119
[22] GAO Y, CHEN Z H, WANG R, et al. LXRα promotes the differentiation of human gastric cancer cells through inactivation of Wnt/β-catenin signaling[J]. J Cancer, 2019, 10(1): 156-167. doi: 10.7150/jca.28600
[23] LIAO W H, WEN Y Q, WANG J, et al. Gallic acid alleviates gastric precancerous lesions through inhibition of epithelial mesenchymal transition via Wnt/β-catenin signaling pathway[J]. J Ethnopharmacol, 2023, 302(Pt A): 115885.
[24] 黄笑尘, 李浩, 王保华, 等. 利多卡因对帕金森模型PC12细胞的保护作用及其机制[J]. 吉林大学学报: 医学版, 2022, 48(3): 638-647.