自噬在机械通气致大鼠脑组织神经元凋亡中的作用

余鑫, 米智华, 高巨

余鑫, 米智华, 高巨. 自噬在机械通气致大鼠脑组织神经元凋亡中的作用[J]. 实用临床医药杂志, 2019, 23(8): 12-15, 21. DOI: 10.7619/jcmp.201908003
引用本文: 余鑫, 米智华, 高巨. 自噬在机械通气致大鼠脑组织神经元凋亡中的作用[J]. 实用临床医药杂志, 2019, 23(8): 12-15, 21. DOI: 10.7619/jcmp.201908003
YU Xin, MI Zhihua, GAO Ju. Role of autophagy in apoptosis of neurons in brain tissue of rats induced by mechanical ventilation[J]. Journal of Clinical Medicine in Practice, 2019, 23(8): 12-15, 21. DOI: 10.7619/jcmp.201908003
Citation: YU Xin, MI Zhihua, GAO Ju. Role of autophagy in apoptosis of neurons in brain tissue of rats induced by mechanical ventilation[J]. Journal of Clinical Medicine in Practice, 2019, 23(8): 12-15, 21. DOI: 10.7619/jcmp.201908003

自噬在机械通气致大鼠脑组织神经元凋亡中的作用

基金项目: 

国家自然科学基金资助项目 81571936

国家自然科学基金资助项目 81601679

国家自然科学基金资助项目 81401626

详细信息
    通讯作者:

    高巨, E-mail: gaoju_003@163.com

  • 中图分类号: R745.1

Role of autophagy in apoptosis of neurons in brain tissue of rats induced by mechanical ventilation

  • 摘要:
      目的  探讨自噬在机械通气致大鼠脑组织神经元凋亡中的作用。
      方法  健康成年雄性Wistar大鼠24只,采用随机数字表法平均分为4组: 对照组(C组)、机械通气组(MV组)、机械通气+6-氨基-3-甲基嘌呤处理组(3MA组),机械通气+雷帕霉素处理组(R组)。C组气管插管后保留自主呼吸,不行机械通气; MV组、3MA组、R组均行机械通气。3MA组及R组于机械通气前15 min分别腹腔注射自噬抑制剂3-MA 30 mg/kg及自噬激动剂雷帕霉素1 mg/kg, C组于MV前15 min腹腔注射等量生理盐水。于机械通气结束时处死大鼠取脑组织,光镜下观察病理学结果。采用TUNEL法检测海马神经元凋亡情况,计算凋亡指数; 采用Western blot检测Bax、Bcl-2、活化型Caspase-3、LC3 Ⅰ、LC3Ⅱ、p62的表达,并计算Bax/Bcl-2、LC3Ⅱ/Ⅰ比值。
      结果  与C组相比, MV组、3MA组和R组病理学损伤严重,海马神经元凋亡指数和Bax/Bcl-2比值升高,海马活化型Caspase-3表达上调, Beclin-1、LC3Ⅱ/Ⅰ表达上调, p62表达下调(P < 0.05); 与MV组比较, 3MA组病理学损伤减轻,海马神经元凋亡指数和Bax/Bcl-2比值降低,海马活化型Caspase-3表达下调, Beclin-1、LC3Ⅱ/Ⅰ表达下调, p62表达上调(P < 0.05); 与MV组比较, R组大鼠海马神经元凋亡指数和Bax/Bcl-2比值升高,海马活化型Caspase-3表达上调, Beclin-1、LC3Ⅱ/Ⅰ表达上调,p62表达下调(P < 0.05)。
      结论  长时间大潮气量机械通气致大鼠脑组织神经元凋亡的机制与自噬有关。
    Abstract:
      Objective  To evaluate the role of autophagy in apoptosis of neurons in brain tissue of rats induced by mechanical ventilation.
      Methods  A total of 24 healthy adult male Wistar rats were divided into 4 groups (n=6) by random number table method, including control group (C group), mechanical ventilation group (MV group), mechanical ventilation combined with 6-amino-3-methylindole treatment group (3MA group), and mechanical ventilation plus rapamycin treatment group (R group). Group C retained spontaneous breathing after endotracheal intubation without mechanical ventilation. MV group, 3MA group and R group were performed mechanical ventilation. 3MA group and the R group received intraperitoneal injection of 30 mg/kg 3-MA and 1 mg/kg rapamycin, respectively, at 15 min before MV, while the C group was given intraperitoneal injection of the same amount of normal saline at 15 min before MV. At the end of mechanical ventilation, 6 rats were sacrificed for brain tissue to observe pathological changes under light microscope. TUNEL assay was used to detect the apoptosis of neurons in the hippocampus CA1 region and calculate the apoptosis index. Using Western blot method to detect the expression of Bax, Bcl-2, activated Caspase-3, LC3 Ⅰ, LC3 Ⅱ, p62, and calculate the ratios of Bax to Bcl-2, LC3 Ⅱ to LC3 Ⅰ.
      Results  Compared with group C, the rest three groups had severe pathological damage, with higher hippocampus neuron apoptosis index and Bax/Bcl-2 ratio, up-regulated expression of activated Caspase-3, increased Beclin-1, LC3Ⅱ/Ⅰand decreased p62 (P < 0.05); compared with MV group, pathological damage, the hippocampus neuron apoptosis index and Bax/Bcl-2 ratio, the expression of activated Caspase-3, Beclin-1, LC3 Ⅱ/Ⅰ was decreased, p62 was up-regulated in 3MA group(P < 0.05); compared with MV group, the changes of above indicators in the R group was contrary to 3M group (P < 0.05).
      Conclusion  Autophagy is involved in the apoptosis of neurons in rat brain tissue induced by high tidal volume ventilation.
  • 机械通气是治疗全身麻醉和急危重患者的重要辅助措施,临床上全麻下高危手术后需要长时间机械通气的患者数量日益增加[1]。然而,有研究[2-3]表明,长时间机械通气可导致呼吸机相关性肺损伤(VILI),甚至导致其他远隔器官的损伤,如急性脑功能障碍[4],其机制可能与诱发脑组织炎症及神经元凋亡有关[5-6]。自噬广泛存在于真核细胞中,它既是细胞的一种自我保护机制,同时也被认为是一种与凋亡、坏死并列的细胞程序性死亡机制[7-8]。研究[9]表明,自噬相关蛋白参与了大鼠呼吸机相关性肺损伤过程,但自噬对机械通气致大鼠脑组织神经元凋亡的作用尚不清楚。本研究拟建立大鼠机械通气致神经元凋亡模型,探讨自噬在其中的作用。

    健康成年雄性Wister大鼠24只,体质量200~250 g, 由扬州大学比较医学中心提供。采用随机数字表法将其分为4组: 对照组(C组)、机械通气组(MV组)、机械通气+6-氨基-3-甲基嘌呤处理组(3MA组)、机械通气+雷帕霉素处理组(R组),每组6只。

    实验前禁食10 h, 自由饮水。腹腔注射0.7%水合氯醛5 mL/kg麻醉大鼠。参照文献[10]的方法制备机械通气致大鼠脑损伤模型。左侧颈内静脉穿刺置管用于泵注维库溴铵维持肌松。颈部正中备皮、消毒,在距胸骨约1 cm处纵行剪开皮肤,钝性分离皮下组织与肌肉,暴露气管,切开并插管,固定。C组保留自主呼吸,不行机械通气。MV组、3MA组及R组接DW 3000型小动物呼吸机(安徽省淮北正华生物仪器设备有限公司)行机械通气。呼气末正压(PEEP)为0时吸入空气。呼吸参数设置: 吸呼比1∶2、潮气量40 mL/kg、通气频率40次/min、通气时间6 h。3MA组及R组于MV前15 min分别腹腔注射自噬抑制剂3-MA 30 mg/kg及自噬激活剂雷帕霉素1 mg/kg, C组于MV前15 min腹腔注射等量生理盐水。

    机械通气结束后立即于深麻醉下断头取脑,冰上快速分离海马,取部分海马组织, 4%多聚甲醛固定后进行石蜡包埋,制备病理切片,常规苏木精-伊红染色,光学显微镜下观察海马CA1区神经元病理学改变。采用TUNEL染色法定量检测凋亡细胞。石蜡切片脱蜡至水,加入浓度为20 pg/mL的蛋白酶K溶液消化,孵育15 min, PBS冲洗2 min(3次),擦干组织周围水分。加入TUNEL反应液混合液覆盖样本区,于湿盒中37 ℃反应1 h。PBS漂洗3 min(3次),滴加POD, 至湿盒内37℃孵育30 min, PBS冲洗5 min(3次),滴加DAB溶液显色,苏木素复染,梯度酒精脱水干燥,二甲苯透明,中性树胶封固。凋亡神经元细胞核为深浅不一的棕黄色或棕褐色,非凋亡神经元细胞核呈蓝色。200倍光学显微镜下观察神经元形态; 随机选取每张切片的5个视野,计算细胞凋亡指数(AI)=凋亡细胞数/细胞总数×100%。

    取上述大鼠海马组织, -80 ℃冰箱冻存。检测时取海马组织,加入蛋白裂解液,匀浆后4 ℃、12 000转/min下离心15min, 取上清液使用BCA法进行蛋白测定。取50 μg总蛋白上样, SDS-PAGE电泳,电泳分离的蛋白转至PVDF膜。5%脱脂奶粉室温封闭2 h, 洗膜缓冲液(TBST)洗膜10 min, 重复3次。加入一抗(抗Caspase-3、Bax/Bcl-2、Beclin-1、LC3Ⅱ、LC3Ⅰ、p62抗体), 4 ℃孵育过夜。TBST洗膜10 min, 重复3次; 加入二抗(辣根过氧化物酶标记山羊抗兔)后室温孵育1 h, TBST清洗,最后加入显色底物显色曝光,采用Image J图像分析软件测定各蛋白表达水平。

    采用SPSS 19.0统计学软件进行分析,计量资料以均数±标准差表示,组间采用单因素方差分析,以P < 0.05为差异有统计学意义。

    C组海马组织未见明显的病理学改变,神经元排列紧密有序,神经元数量较多,胞体大小正常,形态规则,胞核呈圆形或椭圆形,核仁明显,染色质均匀; MV组神经元形态结构呈现明显异常,层次紊乱,神经元数量减少、排列稀疏、间隙增大,胞核深染、固缩; 与MV组相比, 3MA组病理学损伤明显减轻,正常神经元数量较多,神经元排列比较紧密,胞核呈圆形或椭圆形,核仁清晰,少见固缩变性的神经元; 与MV组相比,R组病理学损伤进一步加重。见图 1

    图  1  光镜下观察各组大鼠脑组织病理学改变

    与C组比较,其余3组组海马神经元凋亡指数和Bax/Bcl-2比值升高,海马活化型Caspase-3表达显著上调(P < 0.05); 与MV组比较, 3MA组大鼠的海马神经元凋亡指数和Bax/Bcl-2比值下降,海马活化型Caspase-3表达显著下调(P < 0.05); 与MV组比较, R组大鼠的海马神经元凋亡指数和Bax/Bcl-2比值升高,海马活化型Caspase-3表达显著上调(P < 0.05)。见表 1

    表  1  4组大鼠海马神经元凋亡指数、Bax/Bcl-2比值、活化型Caspase-3表达比较(x±s)
    组别 凋亡指数/% Bax/Bcl-2比值 活化型Caspase-3
    C组(n=6) 4.30±1.50 0.71±0.05 0.51±0.08
    MV组(n=6) 20.30±3.10* 1.73±0.14* 0.87±0.07*
    3MA组(n=6) 13.30±1.50*# 1.36±0.13*# 0.79±0.06
    R组(n=6) 29.00±1.70*# 2.33±0.09*# 1.21±0.08*#
    与C组比较, *P < 0.05; 与MV组比较, #P < 0.05。
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    与C组比较,其余3组海马Beclin-1、LC3Ⅱ/Ⅰ表达上调, p62表达显著下调(P < 0.05); 与MV组比较, 3MA组大鼠海马Beclin-1、LC3Ⅱ/Ⅰ表达下调, p62表达显著上调(P < 0.05); 与MV组比较, R组大鼠海马Beclin-1、LC3Ⅱ/Ⅰ表达上调, p62表达显著下调(P < 0.05)。见表 2

    表  2  4组大鼠海马Beclin-1、LC3Ⅱ/Ⅰ比值、p62表达比较(x±s)
    组别 Beclin-1 LC3Ⅱ/Ⅰ比值 p62
    C组(n=6) 0.41±0.05 0.91±0.05 0.65±0.06
    MV组(n=6) 0.90±0.08* 1.22±0.12* 0.39±0.06*
    3MA组(n=6) 0.55±0.06*# 1.01±0.06*# 0.51±0.07*#
    R组(n=6) 1.37±0.07*# 1.38±0.08*# 0.22±0.05*#
    与C组比较, *P < 0.05; 与MV组比较, #P < 0.05。
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    机械通气是治疗危重患者和全麻患者的重要手段之一,但长时间机械通气也可能会导致神经系统损伤,引起认知功能及记忆力的下降[11]。自噬是广泛存在的细胞维持稳态的生理现象,适当激活的自噬可以阻碍疾病发展,但是过度激活的自噬也可能加重细胞损伤。因此,探讨自噬在机械通气致大鼠脑组织神经元凋亡中的作用具有重要意义。

    本研究大鼠均采用水合氯醛麻醉,均衡了麻醉因素对海马神经元凋亡的影响。参照文献[10], 采用大潮气量长时间机械通气法建立机械通气致脑损伤模型。因为海马是脑区中与记忆和学习练习最为密切,所以本研究采集大鼠海马作为取材部位[12]。本研究结果显示, 6 h、40 mL/kg机械通气下大鼠海马组织出现明显病理学改变,海马神经元凋亡指数升高,提示本研究机械通气致大鼠脑组织神经元凋亡模型制备成功。

    Caspase是一个在细胞凋亡过程中起重要作用的蛋白酶家族, Caspase-9在凋亡起始中具有重要作用,激活的Caspase-9可以激活细胞凋亡的最关键酶Caspase-3, 从而促进后续的细胞凋亡信号[13]。Bcl-2是凋亡抑制因子, Bax是凋亡促进因子,常用Bax/Bcl-2的比值反映细胞凋亡情况[14-15]。本研究表明,与MV组相比, 3MA组Bax/Bcl-2比值下降、海马活化型Caspase-3表达下调, R组Bax/Bcl-2比值升高,海马活化型Caspase-3表达上调,提示自噬抑制剂3-MA减轻了机械通气导致的脑组织神经元凋亡程度,自噬诱导剂雷帕霉素加重了机械通气致脑组织神经元凋亡程度。

    Beclin-1是哺乳动物参与自噬泡形成的特异性基因,是自噬起始的重要调节因子, Beclin-1的表达水平可以反映自噬程度[16]。LC3是哺乳动物细胞中酵母ATG8基因的同源物,分为LC3Ⅰ型和LCⅡ型,自噬发生时LC3 Ⅰ经泛素样加工修饰与磷脂酰乙醇胺结合,形成LC3 Ⅱ, LC3Ⅱ与LC3Ⅰ的比值常用来反映自噬水平[17]。p62是机体内蛋白降解途径的关键蛋白分子,其表达水平与自噬水平呈反比[18]。本研究结果表明,与C组比较, MV组海马Beclin-1、LC3Ⅱ/Ⅰ表达上调,p62表达下调。与MV组比较, 3MA组大鼠海马Beclin-1、LC3Ⅱ/Ⅰ表达下调,p62表达上调, R组与之相反,提示机械通气致大鼠脑组织神经元凋亡的机制与自噬有关。

    综上所述,长时间大潮气量机械通气致大鼠脑组织神经元凋亡的机制与自噬有关,但其具体机制仍有待进一步研究。

  • 图  1   光镜下观察各组大鼠脑组织病理学改变

    表  1   4组大鼠海马神经元凋亡指数、Bax/Bcl-2比值、活化型Caspase-3表达比较(x±s)

    组别 凋亡指数/% Bax/Bcl-2比值 活化型Caspase-3
    C组(n=6) 4.30±1.50 0.71±0.05 0.51±0.08
    MV组(n=6) 20.30±3.10* 1.73±0.14* 0.87±0.07*
    3MA组(n=6) 13.30±1.50*# 1.36±0.13*# 0.79±0.06
    R组(n=6) 29.00±1.70*# 2.33±0.09*# 1.21±0.08*#
    与C组比较, *P < 0.05; 与MV组比较, #P < 0.05。
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    表  2   4组大鼠海马Beclin-1、LC3Ⅱ/Ⅰ比值、p62表达比较(x±s)

    组别 Beclin-1 LC3Ⅱ/Ⅰ比值 p62
    C组(n=6) 0.41±0.05 0.91±0.05 0.65±0.06
    MV组(n=6) 0.90±0.08* 1.22±0.12* 0.39±0.06*
    3MA组(n=6) 0.55±0.06*# 1.01±0.06*# 0.51±0.07*#
    R组(n=6) 1.37±0.07*# 1.38±0.08*# 0.22±0.05*#
    与C组比较, *P < 0.05; 与MV组比较, #P < 0.05。
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  • [1]

    González-López A, Albaiceta G M, Talbot K. Newly identified precipitating factors in mechanical ventilation-induced brain damage: implications for treating ICU delirium[J]. Expert Rev Neurother, 2014, 14(6): 583-588. doi: 10.1586/14737175.2014.915743

    [2]

    Matsuyama H, Amaya F, Hashimoto S, et al. Acute lung inflammation and ventilator-induced lung injury caused by ATP via the P2Y receptors: an experimental study[J]. Respir Res, 2008, 9: 79-79. doi: 10.1186/1465-9921-9-79

    [3]

    Kuipers M T, van der Poll T, Schultz M J, et al. Bench-to-bedside review: Damage-associated molecular patterns in the onset of ventilator-induced lung injury[J]. Crit Care, 2011, 15(6): 235-238. doi: 10.1186/cc10437

    [4]

    Sehielke E, Busch MA, Hildenhagen T, et al. Functional, cognitive and emotional long-term outcome of patients with ischemic stroke requiring mechanical ventilation[J]. J Neurol, 2005, 252(6): 648-654. doi: 10.1007/s00415-005-0711-5

    [5]

    Chen C, Zhang Z, Chen T, et al. Prolonged mechanical ventilation-induced neuroinflammation affects postoperative memory dysfunction in surgical mice[J]. Crit Care, 2015, 19(1): 159-164. doi: 10.1186/s13054-015-0882-0

    [6]

    Quilez M E, Fuster G, Villar J, et al. Injurious mechanical ventilation affects neuronal activation in ventilated rats[J]. Crit Care, 2011, 15(3): R124-R126. doi: 10.1186/cc10230

    [7]

    Zhang J. Autophagy and Mitophagy in Cellular Damage Control[J]. Redox Biol, 2013, 1(1): 19-23. doi: 10.1016/j.redox.2012.11.008

    [8]

    Todde V, Veenhuis M, van der Klei I J. Autophagy: principles and significance in health and disease[J]. Biochim Biophys Acta, 2009, 1792(1): 3-13. doi: 10.1016/j.bbadis.2008.10.016

    [9]

    Hussaun S N, Mofarrahi M, Sigala I, et al. Mechanical ventilation-induced diaphragm disuse in humans triggers autophagy[J]. Am J Respir Crit Care Med, 2010, 182(11): 1377-1386. doi: 10.1164/rccm.201002-0234OC

    [10] 高巨, 罗科, 周罗晶, 等. 大鼠机械通气致脑损伤时脑组织γ-氨基丁酸信号通路活性的变化[J]. 中华麻醉学杂志, 2018, 38(1): 97-100.
    [11]

    Romina Gonzalvo, Octavi Martí-Sistac, Lluís Blanch, et al. Bench-to-bedside review: Brain-lung interaction in the critically ill-a pending issue revisited[J]. Crit Care, 2007, 11(3): 216-221. doi: 10.1186/cc5930

    [12]

    González-López A, López-Alonso I, Aguirre A, et al. Mechanical Ventilation Triggers Hippocampal Apoptosis by Vagal and Dopaminergic Pathways[J]. Am J Respir Crit Care Med, 2013, 188(6): 693-702. doi: 10.1164/rccm.201304-0691OC

    [13]

    Slee EA1, Harte M T, Kluck R M, et al. Ordering the Cytochrome c-Initiated Caspase Cascade: Hierarchical Activation of Caspases-2, -3, -6, -7, -8, and -10 in a Caspase-9-Dependent Manner[J]. The Journal of Cell Biology, 1999, 144(2): 281-292. doi: 10.1083/jcb.144.2.281

    [14]

    Gustafsson A B, Gottlieb R A. Bcl-2 family members and apoptosis, taken to heart[J]. Am J Physiol Cell Physiol, 2007, 292(1): C45-51. doi: 10.1152/ajpcell.00229.2006

    [15]

    Cory S, Adams J M. The Bcl2 family: regulators of the cellular life-or-death switch[J]. Nat Rev Cancer, 2002, 2(9): 647-656. doi: 10.1038/nrc883

    [16]

    Sun Q, Fan W, Zhong Q. Regulation of Beclin-1 in autophagy [J]. Autophagy, 2009, 5(5): 713-716. doi: 10.4161/auto.5.5.8524

    [17]

    Klionsky D J, Abeliovich H, Agostinis P, et al. Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring autophagy in higher eukaryotes [J]. Autophagy, 2008, 4(2): 151-175. doi: 10.4161/auto.5338

    [18]

    Pankiv S, Clausen T H, Lamark T, et al. p62/SQSTM1 binds directly to Atg8/LC3 to facilitate degradation of ubiquitinated protein aggregates by autophagy[J]. J Biol Chem, 2007, 282(33): 24131-24145. doi: 10.1074/jbc.M702824200

  • 期刊类型引用(6)

    1. 陆大浩,高巨,黄天丰,张扬,王骁颖. 电针诱导沉默信息调节因子1依赖性自噬对小鼠脑卒中后中枢性痛的影响. 实用临床医药杂志. 2022(11): 42-47 . 本站查看
    2. 吴云飞,钟海,张智慧,梁鸿章,陈旭源,李想,吴旭. lncRNA EGOT靶向miR-320a对LPS诱导肺泡上皮细胞炎症反应和细胞凋亡的影响. 蚌埠医学院学报. 2021(10): 1325-1330 . 百度学术
    3. 彭园,盛笑,叶新华,于文龙,薛云,成金罗. 高糖调节PINK1/Parkin途径刺激大鼠肾小球系膜细胞氧化应激和炎症反应的研究. 实用临床医药杂志. 2021(20): 6-12 . 本站查看
    4. 滕寅,冉鹏,席阳,付宁华. circ-0005273靶向miR-1200对食管癌Eca109细胞增殖和凋亡的影响. 实用临床医药杂志. 2021(24): 10-15 . 本站查看
    5. 颜克实,王伟伟,余鑫,陆大浩,戴晨,高巨. 二甲双胍单次和多次给药对大鼠机械通气性脑损伤的影响. 实用临床医药杂志. 2020(03): 33-35+39 . 本站查看
    6. 邵灿,马明芳,贾敏. 抗精神病药氯氮平通过AMPK-ULK1-Beclin1信号通路对神经元自噬的影响. 临床和实验医学杂志. 2020(18): 1933-1937 . 百度学术

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出版历程
  • 收稿日期:  2019-01-12
  • 录用日期:  2019-02-14
  • 网络出版日期:  2020-12-03
  • 发布日期:  2019-04-27

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